Show simple item record

dc.contributor.advisorBarrera Bailon, Biviana
dc.contributor.advisorGómez Ramirez, Edwin
dc.coverage.spatialCampus UMNGspa
dc.creatorGonzález Arias, Gloria Janeth
dc.creatorBello Sánchez, Nicoll Johanna
dc.date.accessioned2018-05-23T15:40:16Z
dc.date.accessioned2019-12-26T21:09:18Z
dc.date.available2018-05-23T15:40:16Z
dc.date.available2019-12-26T21:09:18Z
dc.date.created2018-03-21
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/10654/17553
dc.description20 páginas.spa
dc.description.abstractLa cachama blanca (Piaractus brachypomus) es una especie de pez con importancia económica dentro de la actividad pesquera y principalmente acuícola en Colombia. Debido a características que han despertado el interés en el cultivo de esta especie, como la velocidad de crecimiento, resistencia a parásitos y enfermedades, y rusticidad. El presente estudio se realizó una descripción macro y micro anatómica del encéfalo de Piaractus brachypomus, identificando las principales estructuras que lo conforman. Para ello, se realizó un análisis histológico y una descripción macroscópica de algunas regiones del cerebro (bulbos olfatorios, hemisferios telencefálicos, diencéfalo, mesencéfalo, cerebelo y médula espinal), describiendo los núcleos más importantes de cada estructura a partir de cortes transversales y sagitales del cerebro. El material biológico que se procesó fueron 8 alevinos de cachama blanca, a los cuales después de ser sacrificados se les realizó una incisión en el cráneo, con el fin de realizar la extracción del encéfalo, el cual fue procesado y se realizaron cortes de 5µm de espesor teñidos con la técnica de tinción de Nissl. Posteriormente se realizó un mapeo rostrocaudal de las diferentes zonas del encéfalo, donde se pudo observar diferentes núcleos/tractos/regiones. Respecto a la anatomía del cerebro reportada en otros teleósteos se tiene principalmente que, al ser un pez muy versátil en cuanto al hábitat se refiere, se tiene un desarrollo de ciertas áreas del cerebro, entre ellas un lóbulo óptico de un tamaño mayor al reportado a otros teleósteos lo cual indica que es un animal de habito diurno, y además posee una ausencia de un tracto olfativo, lo que nos podría estar indicando una mayor velocidad de la llegada de los estímulos olfatorios.spa
dc.description.tableofcontentsI. RESUMEN II. INTRODUCCIÓN III. MATERIALES Y MÉTODOS IV. RESULTADOS V. DISCUSIÓN DE RESULTADOS VI. CONCLUSIONES VII. BIBLIOGRAFÍAspa
dc.formatpdfspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.languagespaspa
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Militar Nueva Granadaspa
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad Militar Nueva Granada, 2018spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/2.5/co/spa
dc.subjectEncéfalospa
dc.subjectCartografiaspa
dc.subjectNúcleosspa
dc.subjectTeleosteosspa
dc.titleAtlas histológico del cerebro de cachama blanca, piaractus brachypomus (characiformes: characidae)spa
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/articlespa
dc.rights.accessRightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.accessRightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.publisher.departmentFacultad de Ciencias Básicasspa
dc.type.spaTrabajo de gradospa
dc.creator.emailruhm1894@gmail.comspa
dc.creator.emailnico2215rc@gmail.comspa
dc.description.abstractenglishThe Cachama Blanca (Piaractus brachypomus) is a species of fish with economic importance within the fishing activity and mainly aquaculture in Colombia. Due to characteristics that have awakened the interest in the cultivation of this species, such as the speed of growth, resistance to parasites and diseases, and rusticity. The present study carried out a macro and micro anatomical description of the encephalon of Piaractus brachypomus, identifying the main structures that comprise it. For this, a histological analysis and a macroscopic description of some regions of the brain (olfactory bulbs, telencephalic hemispheres, diencephalon, mesencephalon, cerebellum and spinal cord) were performed, describing the most important nuclei of each structure from transverse and sagittal sections of the brain. The biological material that was processed were 8 white cachama fingerlings, which after being sacrificed were made an incision in the skull, in order to perform the extraction of the brain, which was processed and cuts of 5μm were made. Thickness stained with the Nissl staining technique. Subsequently, a rostrocaudal mapping of the different areas of the brain was carried out, where different nuclei / tracts / regions could be observed. Regarding the anatomy of the brain reported in other teleosts it is mainly that, being a very versatile fish as far as the habitat is concerned, there is a development of certain areas of the brain, among them an optical lobe of a size greater than that reported to other teleosts which indicates that it is an animal of diurnal habit, and also has an absence of an olfactory tract, which could be indicating a greater speed of the arrival of olfactory stimuli.spa
dc.title.titleenglishHistological atlas of the cachama blanca brain, piaractus brachypomus (characiformes: characidae)spa
dc.subject.keywordEncephalonspa
dc.subject.keywordMappingspa
dc.subject.keywordNucleusspa
dc.subject.keywordTeleostsspa
dc.publisher.programBiología Aplicadaspa
dc.subject.agrovocPIARACTUS BRACHYPOMUS
dc.subject.agrovocPIARACTUS BRACHYPOMUS - CEREBRO
dc.subject.agrovocCHARACIDAE
dc.creator.degreeBiólogospa
dc.creator.degreeBiólogospa
dc.source.bibliographicCitationAnderson B.G. & Mitchum D. L. 1974. Atlas of Trout Histology. Wyoming game and fish department. Bulletin N° 13. Wyiming, USA. Pp. 4-6, 15-17.spa
dc.source.bibliographicCitationAnken R. & Bourrat F. 1998. Brain atlas of the medaka fish oryzias latipes. Institut national de la recherche agronomique (inra), Paris, 29 pp.spa
dc.source.bibliographicCitationAVMA (American Veterinary Medical Association). 2016. Guidelines for the Euthanasia of Animals. Illinois. United States. 102p.spa
dc.source.bibliographicCitationBalescu C. 2005. A Comparative Study on the External Morphology of the Encephalon in Three Fish Species Belonging to Cyprinidae Family: Amblypharyngodon mola, Danio malabaricus and Rasbora argyrotaenia. Analele Stiintifice ale Universitatii. P 45-50.spa
dc.source.bibliographicCitationBarrera-Bailón, B., Caldas, M. L., & Hurtado-Giraldo, H. (2008). Preliminary morphological and histological study of the pituitary of parapitinga alevins, piaractus brachypomus(cuvier) (characidae). Actualidades Biológicas, 30(89), 171-179.spa
dc.source.bibliographicCitationBecerra, M. Manso, M. J. Rodrýguez-Moldes, I. & Anadon, R. 1994. Primary olfactory.spa
dc.source.bibliographicCitationBernstein, J. J. 1970. Anatomy and physiology of the central nervous system. In Anatomy and histology of the Channel Catfish (Rogers, W. A. & Grizzle, J. M.) Agricultural experiment station Auburn University. Auburn, Alabama. Bethesda, Maryland. Pp 69-78.spa
dc.source.bibliographicCitationButler A. B. 2000. Nervous system. In The loboratory fish (Ostrander, G. K.). Academic.spa
dc.source.bibliographicCitationByrd CA, Brunjes PC. 1995. Organization of the olfactory system in the adult zebrafish: histological, immunohistochemical, and quantitative analysis. J. Comp. Neurol, 358: 247–259.spa
dc.source.bibliographicCitationCadwallader P. 1975. Relationship between Brain Morphology and Ecology in New Zealand Galaxiidae, Particularly Galaxias vulgaris (Pisces: Salmoniformes). New Zealand Journal of Zoology, 2 (1): 35-43.spa
dc.source.bibliographicCitationCaldas M; Tovar B; Contreras B; Rodríguez C; Hurtado G. 2008. Histological And Morphometrical Comparison Between Eremophilus mutisii (Trichomycteridae) And Oncorhynchus mykiss (Salmonidae) Eyes. Acta Biológica Colombiana, 13(2), 73-88.spa
dc.source.bibliographicCitationCastañeda Cortés, D. C. 2012. Descripción de las vías olfativas (Roseta Bulbo olfativo) y evaluación de los efectos histopatológicos causados por el Roundup® Activo sobre el sistema olfativo de alevinos de cachama blanca (Piaractus brachypomus) (Bachelor's thesis, Universidad Militar Nueva Granada).spa
dc.source.bibliographicCitationChandroo, K. P., Duncan, I. J. H. & Moccia. R. D. 2004. Can fish suffer: perspectives on sentience, pain, fear and stress. Applied Animal Behaviour Science 86:225–250.spa
dc.source.bibliographicCitationCollin J.P., Voisin, P., Falcon J., Faure J.P., Brisson P. & Defaye J.R. 1989. Pineal transducers in the course of evolution: molecular organization, rhythmic metabolic activity and role. Arch. Histol. Cytol. 52: 441-449.spa
dc.source.bibliographicCitationCruce, W. L., Stuesse, S. L. & Northcutt. 1999. Brainstem neurons with descending projections to spinal cord of two Elasmobranch fiishes: Thornback guitar fish, platyrhinoidis trseriata, and horn shark, heterodontus francisci. The journal of comparative neurology. 403:534-560.spa
dc.source.bibliographicCitationD'angelo, L. 2013. Brain atlas of an emerging teleostean model: Nothobranchius furzeri. The Anatomical Record, 296(4), 681-691.spa
dc.source.bibliographicCitationDíaz F. & López R. 1993. El cultivo de la Cachama blanca (Piaractus brachypomus) y la Cachama Negra (Colossoma macropomum). Villavicencio, Colombia. Pp 254spa
dc.source.bibliographicCitationDurán E., Ocaña F.M., Gómez A., Broglio C., Jiménez F., Rodríguez F. & Salas C. 2002. Place learning and hippocampal pallium in teleost fish. En: annual meeting of the johnston club of comparative neurology. Orlando (USA).spa
dc.source.bibliographicCitationEaton R; Lee K; Foreman B. 2001. The Mauthner cell and other identified neurons of brainstem escape network of fish. Progress in neurobiology. 63:467-485.spa
dc.source.bibliographicCitationFalcón J., Galarneau K.M., Weller, J.L., Ron B., Chen G., Coon S.L. & Klein D.C. 2001. Regulation of arylalkylamine n-acetyl- transferase-2 (aanat2, ec 2.3.1.87) in the fish pineal organ: evidence for a role of proteasomal proteolysis. Endocrinology, 142: 1804-1813. fibers project to the ventral telencephalon and preoptic region of trout (Salmo trutta): a developmental immunocytochemical study. In Neurobiology of fish olfaction: a review. (Laberge, F. & Hara, T. J.) Brain Research Reviews 36:46-59.spa
dc.source.bibliographicCitationGómez E., Obando M.J., Tovar M.O., Caldas M.L. y Hurtado H. 2011. Estudio Histológico del Tracto Digestivo del Neón Cardenal Paracheirodon axelrodi (Characidae). Journal International Morphology. Vol. 29. 782 – 786.spa
dc.source.bibliographicCitationGroman D. B. 1982. Histology of the Striped Bass. American Fisheries Society.spa
dc.source.bibliographicCitationGuzmán L., Santana D., Verdugo H., Gómez E. y Hurtado H. 2013. Descripción anatómica e histológica del tracto digestivo de Nicuro Pimelodus blochii (Valenciennes, 1840). Revista Orinoquia. Vol. 17. 102 – 110.spa
dc.source.bibliographicCitationHamdani EH; Døving KB. 2007. The functional organization of the fish olfactory system. Progress in Neurobiology, 82: 80–86.spa
dc.source.bibliographicCitationHelfman G. S, Collette B. B, Facey D. E. 1997. The diversity of fishes. Malden, Massachusetts: Blackwell Science, Inc. Pp 48-50, 226-227.spa
dc.source.bibliographicCitationHerrera P., Servili A., Rendón M.C., Sánchez V., Falcón J. & Muñoz C. 2011. The pineal complex of the european sea bass (dicentrarchus labrax): i. Histological, immunohistochemical and qpcr study. J. Chem. Neuroanat., 41 (3): 170-180.spa
dc.source.bibliographicCitationHinton D.E. 1990. Histological techniques In Methods for fish biology. (Schreck C.B, Moyle P.B.) Bethesda. Maryland. Pp 191-211.spa
dc.source.bibliographicCitationIshikawa Y., Yoshimoto M. & Ito H. 1999. A brain atlas of a wild-type inbred strain of the medaka, oryzias latipes. Fish biol. J. Medaka, rincón et al.: cerebro del pez tetra cola roja aphyocharax anisitsi 29 10: 1-26.spa
dc.source.bibliographicCitationJaramillo, J., Gómez-Ramírez, E., Caldas, M. L., Rodríguez, D., & Hurtado, H. (2009). Histology and Morphometry of dorsal root ganglia and their neurons in a fish of indeterminate growth the white Cachama (Piaractus brachypomus). Actualidades Biológicas, 31(90), 43-52.spa
dc.source.bibliographicCitationLaberge F. & Hara T. J. 2001. Neurobiology of fish olfaction: a review. Brain Research Reviews 36:46-59.spa
dc.source.bibliographicCitationLiley NR, Stacey NE. 1983. Hormones, pheromones, and reproductive behavior in fish. En: Hoar WS, Randall DJ, Donaldson EM. Fish Physiology. 1988. Vol. IX, Parte B, Academic Press, New York, p. 1–63.spa
dc.source.bibliographicCitationLondoño C & Hurtado H. 2010. Estudio preliminar morfológico y morfométrico de encéfalo del pez tiburoncito, Ariopsis seemanni (Pisces: Ariidae). Universitas Scientiarum, 15 (2): 101-109.spa
dc.source.bibliographicCitationMancini, M., 2002. Introducción a la biología de los peces. Cursos Introducción a la Producción Animal y Producción Animal I, FAV UNRC.spa
dc.source.bibliographicCitationMukuda T. & Ando M. 2003. Brain Atlas of the Japanese Eel: Comparison to Other Fishes. Mem. Fac. Integrated Arts and Sci., Hiroshima Univ., Ser. IV, Vol. 29 1-25.spa
dc.source.bibliographicCitationMuñoz A, Caldas ML, Hurtado H. 2006. Análisis histomorfométrico del sistema digestivo y glándulas anexas de alevino de cachama blanca. Revista Facultad De Ciencias Básicas, 2 (1): 33- 45spa
dc.source.bibliographicCitationNieuwenhuys, R. 1963. The comparative anatomy of the actinopterygian forebrain. In Histology of the Striped Bass (Groman, D. B.) American Fisheries Society. Bethesda, Maryland. pp. 78.spa
dc.source.bibliographicCitationNüsslein Volhard C. & Dann R. 2002. Zebra fish, a practical approach. Oxford University Press. Pp 76-94.spa
dc.source.bibliographicCitationObando B., Gómez R; Tovar B; Rincón C; Caldas Martínez & Hurtado H. 2013. Estudio morfométrico y topológico del cerebro del pez neón cardenal, paracheirodon axelrodi (characiformes: characidae). Actual. Biol., 35 (98): 45-61.spa
dc.source.bibliographicCitationOcampo, C., 2018. Imagende bulbos olfatorios, tomada a partir de microscopia electrónica. Universidad Militar Nueva Granada.spa
dc.source.bibliographicCitationPineda H., Molina D., Olivera A; Builes G. 2004. Contribución a la relación taxonómica entre cuatro especies de peces de la familia Characidae mediante el Polimorfismo de ADN Amplificado al Azar (RAPD). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 17(4).spa
dc.source.bibliographicCitationPortavella M & Vargas J. 2005. Emotional and spatial learning in goldfish is dependent on different telencephalic pallial systems. Eur. J. Neurosci., 21 (10): 2800-2806.spa
dc.source.bibliographicCitationProphet E; Mills B; Arrington J; Sobón H. 1995. Métodos histotecnológicos. Washington: Registro de Patología de los Estados Unidos de América. Pp 31-33.spa
dc.source.bibliographicCitationPutt F. 1972. Manual of histopathological staining methods. Jhon Wiley. New York. Pp 335.spa
dc.source.bibliographicCitationQuintero V; Rojas B; Gómez E; Rodríguez D; Hurtado H. 2009. Distribución de Botones Gustativos en los Barbillones del Capitán de la Sabana (Eremophilus mutissi). Revista Facultad de Ciencias Básicas, 5: 186-191.spa
dc.source.bibliographicCitationRiaño 2016. Efecto de una presentación comercial de glifosato sobre el área preóptica e hipotálamo de Neón cardenal (Paracheirodon axelrodi). Trabajo de Grado. Facultad de Ciencias Básicas y Aplicadas. Universidad Militar Nueva Granada. Bogota, Colombia. 61p.spa
dc.source.bibliographicCitationRincón L. 2012. Descripción topológica e histológica del hipotálamo y área preóptica de Neón cardenal, Paracheirodon axelrodi (Characiformes: Characidae). Trabajo de Grado. Facultad de Ciencias Básicas y Aplicadas. Universidad Militar Nueva Granada. Bogota, Colombia. 89p.spa
dc.source.bibliographicCitationRincón L., Cavallino L., Alonso F., Lo Nostro F & Pandolfi M. 2016. Morfometría y topología del cerebro del pez tetra cola roja, Aphyocharax anisitsi (Characiformes: Characidae).spa
dc.source.bibliographicCitationRincón, L., Cavallino, L., Alonso, F., Lo Nostro, F., & Pandolfi, M. 2016. Morfometría y topología del cerebro del pez tetra cola roja, Aphyocharax anisitsi (Characiformes: Characidae).spa
dc.source.bibliographicCitationRodríguez; Romero; Salazar G. 1995. Fundamentos de acuicultura continental. INPA. Bogotá, Colombia. Pp. 5-20.spa
dc.source.bibliographicCitationRogers W & Grizzle J. 1979. Anatomy and histology of the Channel Catfish: Chapter nine. Nervous system. Agricultural experiment station Auburn University. Auburn, Alabama.spa
dc.source.bibliographicCitationRose J. 2002. The Neurobehavioral Nature of Fishes and the Question of Awareness and Pain. Reviews in Fisheries Science, 10 (1): 1-38.spa
dc.source.bibliographicCitationSaito K & Watanabe S. 2006. Deficits in acquisition of spatial learning after dorsomedial telencephalon lesions in goldfish. Behav. Brain res., 172 (2): 187-194.spa
dc.source.bibliographicCitationSchreck & Moyle. 1990. Methods for fish biology. Anaesthesia, surgery and related techniques. American Fisheries Society, Bethesda, 213-272.spa
dc.source.bibliographicCitationSpeca DJ; Lin DM; Sorensen PW; Isacoff EY; Ngai J; Dittman AH. 1999. Functional identification of a goldfish odorant receptor, Neuron, 23: 487–498.spa
dc.source.bibliographicCitationTakashima F & Hibiya T. 1995. An atlas of fish histology normal and pathological features. Kodansha, Tokio, 213 pp.spa
dc.source.bibliographicCitationTiwary B., Kirubagaran R & amp; Ray A. 2002. Gonadotropin releasing hormone (gnrh) neurones of triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch): an immunocytochemical study. Comparative Biochemistry and Physiology Part A 132 375–380.spa
dc.source.bibliographicCitationVizcaino L., Rincón L., Bulla M., Gómez E & Hurtado H. 2013. Estudio morfológico y morfométrico del cerebro del bagre tigrito Pimelodus pictus (Pimelodidae) Steindachner (1876). Revista Facultad de Ciencias Básicas, 9(1), 94-107.spa
dc.source.bibliographicCitationWales, J. H. & Yasutake, W. T. 1983. Microscopic Anatomy of Salmonids: An Atlas. Pp 104-5. United States department of the interior. Washington D.C., U. S. A. Ed. Fish and Wild life service.spa
dc.source.bibliographicCitationWullimann F., Rupp B & Relchert H. 1996. Neuroanatomy of zebrafish brain: a topological atlas. Birkhaeuser verlag, switzerland, 190 pp.spa
dc.thesis.levelPregradospa
dc.thesis.disciplineCiencias Básicas - Biologia Aplicadaspa
dc.description.notesANEXO 1 ABREVIATURAS CORTE TRANVERSAL: • a: nucleus anteriores of area octavolateralis • ao: area octavolateralis • Cace : canalis centralis • Cbsg : stratum granulare of valvula cerebelli • Cbsm: stratum moleculare of valvula cerebelli • Cbsp : stratum ganglionare (Purkinje) of corpus cerebelli • CC : crista cerebellaris • CCb : comisura cerebellaris • Cnd : cornu dorsale • CVR : comisura ventrodorsalis rhomboncephali • D : thelencephalic dorsal area • DOT : tractus opticus dorsalis • egl : eminentia granularis laterales • EP : epiphysis • Fm : fasciculus Mauthneri • Fr : faciculus retroflexus • Fs : fasciculus solitarius • GC : griceum central • H : habenular region • Hd : hipotalamus periventricularis dorsalis • HIPOF: hipofisis • HV: hipotalamus periventricularis ventralis • IIII: nervus oculomotorius • Ir: infundibularis recessus • L: nervus lineae lateralis • LC: lobus caudalis of corpus cerebelli • LG : lateral genicular nucleus • LV : nucleus lateralis valvulae • MOT : tractus opticus medialis • NDIL : nucleus diffusus of lobus inferioris • NDIL(a) : nucleus diffusus of lobus inferioris (anterior portion) • NDIL(p) : nucleus diffusus of lobus inferioris (posterior portion) • NDTL : nucleus diffussus of torus lateralis • NFS/LX : nucleus of fasciculus solitarius/ lobus vagus • NIX : nucleus of nervus glossopharyngeus • NTv : nucleus of tractus descendens of nervus trigeminus • NV : nervus facialis • NX : nucleus of nervus glossopharyngeus • Oi : oliva inferioris • OT : tectum opticum • P : nucleus posterioris of diencephalon • PGL : glomerulosus • PGZ3 : periventricular grey zone • Pit : hipophysis • PM : nucleus preocticus magnocellularis • PPp: parte posterior del nucleo parvocelular preoptico • PSM : magnocellular superficial pretectal nucleus • r/v3 : recessus of ventruculus tertius • RI : nucleus reticularis inferioris • RI/CmSP: reticularis inferiores/columna motoria spinalis • Rs : nucleus reticularis superioris • SAC : stratumalbum centrale of tectum opticum • Sc : nucleus suprachiasmaticus • SGC : stratum griseum centrale of tectum opticum • Sm : stratum marginale of tectum opticum • Tl : Torus longitudinalis • TP : nucleus tuberis posterioris • Ts : torus semicircularis • Ts2 : torus semicircularis (layer 2) • Ttbc : tractus tectobulbaris cruciatus • TV : nucleus tuberis ventralis • V4 : ventriculus quartus • VCSg : stratum granulare of valvula cerebelli • VCSm: stratum moleculare of valvula cerebelli • VIII : nervus vestibularis • VL : ventrolateral thalame nucleus • VM : ventromedial thalame nucleus • VOT : Tractus opticus ventralis • X : nervus vagus • XIII: motor nucleus of the hypoglossal nerve ABREVIATURAS CORTE SAGITAL: • CC : crista cerebellaris • CCe : corpus cerebelli • CCer: commissura cerebelli • CM : corpus mamillare • CO: chiasma opticum • CON: caudal octavolateralis nucleus • Cpop : commissura postoptica • DI : lateral zone of D • DIL : difusse nucleus of the inferior lobe • DIV: trochlear decussation • Dm: medial zone of D • DOT : dorsomedial optic tract • DP : dorsal posterior thalamic nucleus • Dp : posteior zone of D • DTN : dorsal tegmental nucleus • DV/TBS: desending trigeminal root / tractus bulbospinalis • ECL: external celular layer of olfatory bulb including mitral cells • EG : eminenti granularis • GC : grieum centrale • Hc : caudal zone of periventricular hypothalamus • Hd : caudal zone of periventricular hypothalamus • Hv : ventral zone of periventricular hypothalamus • ICL: internal cellular layer of olfatory bulb • LCa: lobus caudalis cerebelli • LR : lateral recess of diencephalic ventricle • LVIII : facial lobe • LX: vagal lobe • MON : medial octavolaterallis nucleus • ON : optic nerve • PGZ2 : periventricular gray zone of optic tectum (zone 2) • PGZ3 : periventricular gray zone of optic tectum (zone 3) • PTN: posterior tuberal nucleus • POF : primary olfactory fiber layer • PPa : parvocellular preoptic nucleus, anterior part • PPp : parvocellular preoptic nucleus, posterior part • PR : posterior recess of diencephalic ventricle • Sc : nucleus suprachiasmaticus • TeO: tectum opticum • TLa : torus lateralis • Ts : torus semicircularis • TSc : central nucleus of torus semicircularis • TSvl : ventrolateral nucleus of torus semicircularis • TeV : tectal ventricle • TTB : tractus tectobulbaris • TTBc : tractus tectobulbaris cruciatus • TTBr : tractus tectobulbaris rectus • Val : lateral division of valvula cerebelli • Vam: medial division of valvula cerebelli • VI : lateral nucleus of V • VIII : octaval nerve • VOT : ventrolateral optic tract • Vv : ventral nucleus of V • X : vagal nervespa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/articlespa
dc.type.dcmi-type-vocabularyTextspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadasspa
dc.contributor.refereeJaramillo Gómez, Jenny Andrea
dc.contributor.refereeDuque Díaz, Ewing Rafael


Files in this item

Thumbnail
Thumbnail

This item appears in the following Collection(s)

Show simple item record

Derechos Reservados - Universidad Militar Nueva Granada, 2018
Except where otherwise noted, this item's license is described as Derechos Reservados - Universidad Militar Nueva Granada, 2018