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Optimización del protocolo para la extracción y la cuantificación de proteínas totales en semillas germinadas de maíz (Zea mays L.)

dc.creatorCorrea Navarro, Yaned Milena
dc.creatorBuriticá Salazar, Laura María
dc.creatorRivera Giraldo, Juan David
dc.creatorPenagos González, Juan Pablo
dc.creatorTorres Osorio, Javier Ignacio
dc.date2017-02-07
dc.date.accessioned2021-03-09T17:37:22Z
dc.date.available2021-03-09T17:37:22Z
dc.identifierhttp://revistas.unimilitar.edu.co/index.php/rfcb/article/view/2756
dc.identifier10.18359/rfcb.2756
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/10654/37592
dc.descriptionEl maíz (Zea mays L.) es el cereal de mayor cultivo a nivel mundial, del cual se pueden obtener para consumo humano, harina, fibra, aceite y proteínas; de estas últimas se han aislado diferentes tipos tales como albúminas, globulinas, prolaminas y gluteninas; sin embargo, dada la variedad de estas biomoléculas, su obtención no ha sido fácil. Este trabajo se realizó para determinar el mejor método para la extracción y la cuantificación de las proteínas totales en semillas germinadas de maíz (Zea mays L.), para lo cual se compararon seis protocolos de extracción que resultaron al combinar dos métodos físicos convencionales: agitación orbital o asistida con ultrasonido, y tres solventes de extracción: ácido tricloroacético, Tris-Base y Tris-HCl. Previamente se eligió el mejor método de cuantificación por espectroscopía de ultravioleta visible empleando los reactivos cromogénicos de: Lowry, Bio-Rad y Bradford. Los mejores resultados (10,83 mg/l de proteína) se obtuvieron con la extracción asistida con ultrasonido en combinación con Tris-Base y empleando el reactivo de Bradford para la generación del color y la posterior cuantificación por espectroscopía de ultravioleta-visible.es-ES
dc.formatapplication/pdf
dc.languagespa
dc.publisherUniversidad Militar Nueva Granadaes-ES
dc.relationhttp://revistas.unimilitar.edu.co/index.php/rfcb/article/view/2756/2451
dc.relation/*ref*/Aminian M. Nabatchian F. Vaisi-Raygani A. y Torabi M. 2013. Mechanism of coomassie brilliant blue G-250 binding to cetyltrimethylammonium bromide: an interference with the Bradford assay. Analytical Biochemistry, 434: 287-291. Aspelund M.T. 2010. Membrane-based separations for solid/liquid clarification and protein purification. Graduate Theses and Dissertations. Paper 11771. Aspelund M.T. y Glatz C.E. 2010. Purification of recombinant plant-made proteins from corn extracts by ultrafiltration. Journal of Membrane Science, 353: 103-110. Asturias M.A. 2004. Maíz, de alimento sagrado a negocio del hambre. Acción ecológica. Red por una América Latina libre de transgénicos. Hivos. Quito. p. 9-26. BIO-RAD Protein Assay. http://www.bio-rad.com/LifeScience/pdf/Bulletin_9004.pdf y http://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/lsr/literature/Bulletin_1069.pdf. Páginas consultadas el 19 de agosto de 2014. Bodzon-Kulakowska A. Bierczynska-Krzysk A. Dylag T. Drabik A. Suder P. Noga M. Jarzebinska J. y Silberring J. 2007. Methods for samples preparation in proteomic research. Journal of Chromatography B, 849: 1-31. Bradford M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72: 248-254. Cho K. Torres N.L. Subramanyam S. Deepak S.A. Sardesai N. Han O. Williams C.E. Ishi H. Iwahashi H. y Rakwal R. 2006. Protein extraction/solubilization protocol for monocot and dicot plant gel-based proteomics. Journal of Plant Biology, 49: 413-420. FAO, Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación. 2010. Trends in the Crop Sector: FAO. http://www.fao.org/docrep/015/i2490e/i2490e03b.pdf. FENALCE. 2010. El cultivo del maíz, historia e importancia. El Cerealista. Colombia. García H. y Vázquez R. 1998. Cuantificación de proteínas: Una revisión. BioTecnología, 3: 77-88. G-BIOSCIENCES. A Geno Technology, Inc. (USA) Brand 2014. Ghafoor A. Ahmad Z. Qureshi A.S. y Bashir M. 2002. Genetic relationship in Vigna mungo (L.) Hepper and V. radiata (L.) R. Wilczek based on morphological traits and SDS-PAGE. Euphytica, 123: 367-378. Görg A. Weiss W. y Dunn M.J. 2004. Current two-dimensional electrophoresis technology for proteomics. Review. Proteomics, 4: 3665-3685. Horax R. Hettiarachchy N. Kannan A. y Chen P. 2011. Protein extraction optimization, characterization, and functionalities of protein isolate from bitter melon (Momordica charantia) seed. Food Chemistry, 124: 545-550. http://info.gbiosciences.com/blog/bid/152959/What-is-the-Role-of-Buffer-System-in-Protein-Extraction-and-Clarification. Página consultada el 19 de febrero de 2015. Kellogg E.A. 2001. Evolutionary history of the grasses. Plant Physiology, 125: 1198–1205 Ku H-K. Lim H-M. Oh K-H. Yang H-J. Jeong J-S. y Kim S-K. 2013. Interpretation of protein quantitation using the Bradford assay: Comparison with two calculation models. Analytical Biochemistry, 434: 178-180. Lowry O.H. Rosebrough N.J. Farr A.L. y Randall R.J. 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. The Journal of Biological Chemistry, 193: 265-275. Moure A. Sineiro J. Domínguez H. y Parajó J.C. 2006. Functionality of oilseed protein products: A review. Food Research International, 39: 945-963. Natarajan S. Xu C. Caperna T.J. y Garrett W.M. 2005. Comparison of protein solubilization methods suitable for proteomic analysis of soybean seed proteins. Analytical Biochemistry, 342: 214–220. Paniwnyk L. Beaufoy E. Lorimer J. P. y Mason T.J. 2001. The extraction of rutin from flower buds of sophora japonica. Ultrasonics Sonochemistry, 8: 299-301. Ranjan S. Matcha R. Madhuri B. y Babu N. 2012. Comparative evaluation of protein extraction methods from few leguminous seeds. International Journal of Advanced Biotechnology and Research, 3: 558-563. Rostagno M.A. y Prado J.M. 2013. Natural product extraction: principles and applications. The Royal Society of Chemistry, Londres: RSC Publishing. 89-104. Shukla R. y Cheryan M. 2001. Zein: the industrial protein from corn. Industrial Crops and Products, 13: 171-192. Singh N. Jain N. Kumar R. Jain A. Singh N.K. y Rai V. 2015. A comparative method for protein extraction and 2-D gel electrophoresis from different tissues of Cajanus cajan. Frontiers in Plant Science. 6:606. Skoog D.A. Holler F.J. y Crouch S.R. 2008. Principios de análisis instrumental. Sexta edición. Cengage Learning Editores. México D.F. Tavakolipour H. Bagheri L. y Madadlou A. 2015. Pomegranate seed oil-loaded particles of the zein cross-linked with citric acid. Journal of Food Process Engineering, 38: 49-56. Wegary D. Labuschagne M.T. y Vivek B.S. 2011. Protein quality and endosperm modification of quality protein maize (Zea mays L.) under two contrasting soil nitrogen environments. Field Crops Research, 121: 408-415.
dc.rightsDerechos de autor 2017 Revista Facultad de Ciencias Básicases-ES
dc.rightshttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0es-ES
dc.sourceRevista Facultad de Ciencias Básicas; Vol. 13 No. 1 (2017); 65-68en-US
dc.sourceRevista Facultad de Ciencias Básicas; Vol. 13 Núm. 1 (2017); 65-68es-ES
dc.source2500-5316
dc.source1900-4699
dc.subjectEvaluación de proteínas totaleses-ES
dc.subjectanálisis de biomoléculases-ES
dc.subjectmétodo espectrofotométricoes-ES
dc.subjectlixiviaciónes-ES
dc.subjectBradfordes-ES
dc.titleOptimización del protocolo para la extracción y la cuantificación de proteínas totales en semillas germinadas de maíz (Zea mays L.)es-ES
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/article
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/publishedVersion


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